Preview

Андрология и генитальная хирургия

Расширенный поиск

Плацебо-контролируемое двойное слепое рандомизированное исследование применения L-карнитина, ацетил-L-карнитина или комбинации L-карнитина и ацетил-L-карнитина у мужчин с идиопатической астенозооспермией

https://doi.org/10.17650/2070-9781-2014-1-59-68

Полный текст:

Аннотация

Цель исследования - оценить эффективность монотерапии L-карнитином (LК), ацетил-L-карнитином (АLК) и их комбинации для улучшения подвижности сперматозоидов и общей способности эякулята к связыванию свободных радикалов кислорода. Дизайн: рандомизированное двойное слепое плацебо-контролируемое исследование.

Место проведения: отделение андрологии, отдел внутренней медицины, политехнический университет Марке, Италия.

Пациенты: 60 мужчин с бесплодием в возрасте 20–40 лет со следующими исходными критериями: концентрация сперматозоидов > 20 × 10 6 / мл, прогрессивная подвижность < 50 %, сперматозоиды с нормальной морфологией > 30 %. Исследование завершили 59 больных.

Вмешательство: пациенты получали по двойной слепой схеме 3 г LК в сутки, 3 г АLК в сутки, комбинацию 2 г LК + 1 г АLК в сутки или плацебо. Исследование состояло из 1 мес включения, 6 мес терапии и 3 мес наблюдения.

Основной оцениваемый критерий: различия в параметрах эякулята, использованных для отбора пациентов, и различия в общей способности семенной плазмы к связыванию свободных радикалов кислорода.

Результаты: у пациентов, получавших АLК в виде моно- или комбинированной терапии с LК, наблюдалось улучшение подвижности сперматозоидов (общей и прогрессивной, включая кинетические характеристики, определяемые компьютерным анализом эякулята). Комбинированная терапия позволила статистически значимо улучшить прямую прогрессивную подвижность через 3 мес. Также отмечалось увеличение общей способности семенной плазмы к связыванию гидроксильных и пероксильных радикалов кислорода, которая положительно коррелировала с улучшением подвижности сперматозоидов. У пациентов с более низкими исходными показателями подвижности и общей связывающей способности семенной плазмы показана более высокая эффективность лечения.

Выводы: применение LК и АLК эффективно в увеличении подвижности сперматозоидов у пациентов с идиопатической астенозооспермией и улучшении общей способности семенной плазмы к связыванию свободных радикалов в этой же группе больных.

Автор перевода: К. А. Ширанов (кафедра урологии ГБОУ ВПО «Ростовский государственный медицинский университет» Минздрава России, Ростов-на-Дону)

 

Об авторах

Giancarlo Balercia
Polytechnic University of Marche, Ancona
Италия
M.D., Andrology Unit and Laboratory of Andrology, Endocrinology, Department of Internal Medicine


Francesco Regoli
Polytechnic University of Marche, Ancona
Италия
Ph.D., Department of Biology and Genetics, Umberto I Hospital, School of Medicine


Tatiana Armeni
Polytechnic University of Marche, Ancona
Италия
Ph.D., Department of Biology and Genetics, Umberto I Hospital, School of Medicine


Aleardo Koverech
University of Padua
Италия
M.D., Carnitine Research Unit, Sigma Tau, Pomezia


Franco Mantero
University of Padua
Италия
M.D., Endocrinology, Department of Medical and Surgical Sciences, Padua, Italy


Marco Boscaro
Polytechnic University of Marche, Ancona
Италия
M.D., Andrology Unit and Laboratory of Andrology, Endocrinology, Department of Internal Medicine


Список литературы

1. Bremer J. Carnitine-metabolism and functions. Physiol Rev 1983;63:1420–80.

2. Jeulin C., Dacheux J. L., Soufir J. C. Uptake and release of free L-carnitine by boar epididymal spermatozoa in vitro and subsequent acetylation rate. J Reprod Fertil 1994;100:263–71.

3. Di Lisa F., Barbato R., Manebo R., Siliprandi N. Carnitine and carnitine esters in mitochondrial metabolism and function. In: De Jong J. W., Ferrari R., eds. The carnitine system. A new therapeutical approach to cardiovascular diseases. Dordrecht: Kluwer Academic, 1995:21–38.

4. Enomoto A., Wempe M. F., Tsuchida H. et al. Molecular identification of a novel carnitine transporter specific to human testis. Insights into the mechanism of carnitine recognition. J Biol Chem 2002;39:36262–71.

5. Bohmer T., Johansen L. Carnitinebinding related suppressed oxygen uptake by spermatozoa. Arch Androl 1978;1:321–4.

6. Jeulin C., Lewin L. M. Role of free L-carnitine and acetyl-L-carnitine in post-gonadal maturation of mammalian spermatozoa. Hum Reprod Update 1996;2:87–102.

7. Radigue C., Es-Slami S., Soufir J. C. Relationship of carnitine transport across the epididymis to blood carnitine and androgens in rats. Arch Androl 1996;37:27–31.

8. Alvarez J. G., Storey B. Spontaneous lipid peroxidation in rabbit epididymal spermatozoa: its effect on sperm motility. Biol Reprod 1982;27:1102–8.

9. Aitken R. J., Clarkson J. S. Cellular basis of defective sperm function and its association with the genesis of reactive oxygen species by human spermatozoa. J Reprod Fertil 1987;81:459–69.

10. Aitken R. J., Clarkson J. S., Fishel S. Generation of reactive oxygen species, lipid peroxidation and human sperm function. Biol Reprod 1989;40:183–97.

11. Rao B., Soufir J. C., Martin M., David G. Lipid peroxidation in human spermatozoa as related to midpiece abnormalities and motility. Gamete Res 1989;24:127–34.

12. Suleiman S. A., Ali M. E., Zaki Z. M. et al. Lipid peroxidation and human sperm motility: protective role of vitamin E. J Androl 1996;17:530–7.

13. Aitken R. J., Krausz C. Oxidative stress, DNA damage and the Y chromosome. Reproduction 2001;122:497–506.

14. Aitken R. J., Baker M. A. Reactive oxygen species generation by human spermatozoa: a continuing enigma. Int J Androl 2002;25:191–4.

15. Balercia G., Moretti S., Vignini A. et al. Role of nitric oxide concentration on human sperm motility. J Androl 2004;25:245–9.

16. Winston G. W., Regoli F., Dugas A. J. Jr et al. A rapid chromatographic assay for determining oxyradical scavenging capacity of antioxidants and biological fluids. Free Radic Biol Med 1998;24:480–93.

17. Regoli F., Winston G. W. Quantification of total antioxidant scavenging capacity (TOSC) of antioxidants for peroxynitrite, peroxyl radicals and hydroxyl radicals. Toxicol Appl Pharmacol 1999;156:96–105.

18. Balercia G., Mantero F., Armeni T. et al. Oxyradical scavenging capacity toward different reactive species in seminal plasma and sperm cells. A possible influence on kinetic parameters. Clin Chem Lab Med

19. ;41:13–9.

20. Lenzi A., Culasso F., Gandini L. et al. Placebo-controlled, double blind, cross-over trial of glutathione therapy in male infertility. Hum Reprod 1993;8:1657–62.

21. Balercia G., Mosca F., Mantero F. et al. Conezyme Q10 supplementation in infertile men with idiopathic asthenozoospermia: an open uncontrolled pilot study. Fertil Steril 2004;81:93–8.

22. Costa M., Canale D., Filicori M. et al. L-сarnitine in idiopathic asthenozoospermia: a multicenter study. Andrologia 1994;26:155–9.

23. Vicari E., Calogero A. E. Effects of treatment with carnitines in infertile patients with prostato-vesiculo-epididymitis. Hum Reprod 2001;16:2338–42.

24. Vicari E., La Vignera S., Calogero A. E. Antioxidant treatment with carnitine is effective in infertile patients with prostatovesiculo-epididymitis and elevated seminal leukocyte concentration after treatment with nonsteroidal anti-inflammatory compounds. Fertil Steril 2002;78:1203–8.

25. Lenzi A., Lombardo F., Sgrò P. et al. Use of carnitine therapy in selected cases of male factor infertility: a double blind crossover trial. Fertil Steril 2003;79:292–300.

26. Lenzi A., Sgrò P., Salacone P. et al. Placebo controlled double blind randomized trial on the use of L-carnitine and L-acetylcarnitine combined treatment in asthenozoospermia. Fertil Steril 2004;81:1578–84.

27. Kobayashi A., Fujisawa S. Effect of L-carnitine on mitochondrial acyl-carnitine, acyl-coenzyme A and high energy phosphate in ischemic dog hearts. J Mol Cell Cardiol 1994;26:499–508.

28. World Health Organization. Laboratory manual for the examination of human semen and semen-cervical mucus interaction. 4th ed. Cambridge: Cambridge University Press, 1999.

29. Lewis S., Boyle P., McKinney M.B. et al. Total antioxidant capacity of seminal plasma is different in fertile and infer tile men. Fertil Steril 1995;64:868–70.

30. Rhemrev J. P., Van Overveld F. W., Haenen G. R. et al. Quantification of the nonenzymatic fast and slow TRAP in a postaddition assay in human seminal plasma and the antioxidant contribution of various seminal compounds. J Androl 2000;21:913–20.

31. Dayanandan A., Kumar P., Panneerselvam C. Protective role of L-carnitine on liver and heart lipid peroxidation in atherosclerotic rats. J Nutr Biochem 2001;12:254–7.

32. Arockia Rani P. J., Panneerselvam C. Carnitine as a free radical scavenger in aging. Exp Gerontol 2001;36:1713–26.

33. Arockia Rani P. J., Panneerselvam C. Effects of L-carnitine on brain lipid peroxidation and antioxidant enzymes in old rats. J Gerontol 2002;57: B134–7.

34. Arduini A. Carnitine and its acyl estersas secondary antioxidants? Am Heart J 1992;123:1726–7.


Для цитирования:


Balercia G., Regoli F., Armeni T., Koverech A., Mantero F., Boscaro M. Плацебо-контролируемое двойное слепое рандомизированное исследование применения L-карнитина, ацетил-L-карнитина или комбинации L-карнитина и ацетил-L-карнитина у мужчин с идиопатической астенозооспермией. Андрология и генитальная хирургия. 2014;15(1):59-68. https://doi.org/10.17650/2070-9781-2014-1-59-68

For citation:


Balercia G., Regoli F., Armeni T., Koverech A., Mantero F., Boscaro M. Placebo-controlled double-blind randomized trial on the use of L-carnitine, L-acetylcarnitine, or combined L-carnitine and L-acetylcarnitine in men with idiopathic asthenozoospermia. Andrology and Genital Surgery. 2014;15(1):59-68. (In Russ.) https://doi.org/10.17650/2070-9781-2014-1-59-68

Просмотров: 518


Creative Commons License
Контент доступен под лицензией Creative Commons Attribution 4.0 License.


ISSN 2070-9781 (Print)
ISSN 2412-8902 (Online)