Содержание эритропоэтина в семенной жидкости в норме и при олигоастенозооспермии

Введение. Согласно результатам немногочисленных исследований белок эритропоэтин принимает участие в регуляции сперматогенеза, воздействуя на синтез гормонов, в частности стероидных. В настоящий момент физиологическое и патогенетическое воздействие эритропоэтина на эякулят человека досконально не изучено. В связи с этим изучение уровня этого белка в эякуляте при заболеваниях органов мужской репродуктивной системы, а также при их отсутствии представляется актуальным.

Цель исследования – определение концентрации эритропоэтина в эякуляте здоровых мужчин и пациентов с олигоастенозооспермией.

Материалы и методы. Исследованы образцы эякулята 52 мужчин репродуктивного возраста с помощью анализатора спермы SQA-V (MES, Израиль). По результатам исследования сформированы 2 группы: в основную вошли 18 мужчин cо сниженной фертильностью, в контрольную группу – 34 мужчины с нормальными показателями спермограммы. Концентрацию эритропоэтина в семенной жидкости определяли путем твердофазного иммуноферментного анализа с использованием тест-системы «Эритропоэтин-ИФА-БЕСТ» (А-8776) («Вектор-Бест», Россия).

Результаты. Эритропоэтин был обнаружен во всех образцах эякулята, значения варьировали в диапазоне от 9,37 до 193,95 мМЕ / мл и различались в 20,7 раза (р = 0,3). Медиана его концентрации у пациентов основной группы составила 64,49 мМЕ / мл (41,96; 118,16 мМЕ / мл), что в 1,36 раза выше, чем в группе сравнения (47,16 мМЕ / мл (18,15; 90,94 мМЕ / мл). Между концентрацией эритропоэтина и параметрами спермограммы не обнаружено статистически значимых корреляций (r <|0,3|).

Заключение. При олигоастенозооспермии отмечается тенденция к увеличению содержания эритропоэтина в семенной жидкости, что требует дальнейших исследований с более детальной стратификацией обследованных в зависимости от причин, вызвавших снижение числа сперматозоидов.

1. Deshpande P.S., Gupta A.S. Causes and prevalence of factors causing infertility in a public health facility. J Hum Reprod Sci 2019;12(4):287–93. DOI: 10.4103/jhrs.JHRS_140_18.

2. Лебедев Г.С., Голубев Н.А., Шадеркин И.А. и др. Мужское бесплодие в Российской Федерации: статистические данные за 2000–2018 годы. Экспериментальная и клиническая урология 2019;(4):4–13.

3. Сулима А.Н., Литвинов В.В., Клименко П.М. и др. Особенности мужской инфертильности как единственного фактора бесплодия супружеской пары в клинике ВРТ. Экспериментальная и клиническая урология 2019;(4):68–73.

4. Качура Д.В., Волчек В.А., Кучумова Н.Ю., Галькович К.Р. Случай ультразвуковой диагностики абдоминального крипторхизма. Ультразвуковая и функциональная диагностика 2007;(4):175–6.

5. Nassiri N., English M., Lashkari N. et al. Reproductive urologist and gynecologist involvement in postvasectomy sperm retrieval procedures at American fertility clinics. Urology 2019;133:116–20. DOI: 10.1016/j.urology.2019.08.019.

6. Kobori Y. Home testing for male factor infertility: a review of current options. Fertil Steril 2019; 111(5):864–70. DOI: 10.1016/j.fertnstert.2019.01.032.

7. Проскурнина Е.В., Мельников Н.А., Долгих О.В. и др. Антиоксидантный потенциал семенной жидкости при нормозооспермии патозооспермии. Андрология и генитальная хирургия 2020;21(2):14–9.. DOI: 10.17650/2070-9781-2020-21-2-14-19.

8. Druart X., de Graaf S. Seminal plasma proteomes and sperm fertility. Anim Reprod Sci 2018;194:33–40. DOI: 10.1016/j.anireprosci.2018.04.061.

9. Соснин Д.Ю., Галькович К.Р. Васкулоэндотелиальный фактор роста и фертильность эякулята. Результаты предварительного исследования. Лабораторная служба 2020;9(1):84–9.

10. Соснин Д.Ю., Зубарева Н.А., Ненашева О.Ю. и др. Концентрация прокальцитонина в эякуляте и сыворотке крови здоровых мужчин и мужчин с олигозооастеноспермией. Урология 2017;(1):61–5. DOI: 10.18565/urol.2017.1.61-65.

11. Perreault A.A., Venters B.J. Integrative view on how erythropoietin signaling controls transcription patterns in erythroid cells. Curr Opin Hematol 2018;25(3):189–95. DOI: 10.1097/MOH.0000000000000415.

12. Van Vuren A.J., Eisenga M.F., van Straaten S. et al. Interplay of erythropoietin, fibroblast growth factor 23 and erythroferrone in patients with hereditary hemolytic anemia. Blood Adv 2020;4(8):1678–82. DOI: 10.1182/bloodadvances.2020001595.

13. Selbes Y.S., Caglayan M.G., Eryilmaz M. et al. Surface-enhanced Raman probe for rapid nanoextraction and detection of erythropoietin in urine. Anal Bioanal Chem 2016;408(29):8447–56. DOI: 10.1007/s00216-016-9966-1.

14. Widl K., Brettschneider J., Schattauer D. et al. Erythropoietin in cerebrospinal fluid: age-related reference values and relevance in neurological disease. Neurochem Res 2007;32(7):1163–8. DOI: 10.1007/s11064-007-9286-0.

15. Hung G.Y., Jeng M.J., Lin C.Y. et al. The relationship between serum and saliva erythropoietin concentrations in adults, full-term and premature infants. Zhonghua Min Guo Xiao Er Ke Yi Xue Hui Za Zhi 1998;39(6):380–5.

16. Захаров Ю.М., Багаутдинов Д.Е., Рыкун В.С. Содержание эритропоэтина в слезной жидкости человека при использовании контактных линз и миопической рефракции. Российский физиологический журнал им. И.М. Сеченова 2012;98(5):665–75.

17. Wang Z., Khor S., Cai D. Regulation of muscle and metabolic physiology by hypothalamic erythropoietin independently of its peripheral action. Mol Metab 2020;32:56–68. DOI: 10.1016/j.molmet.2019.12.001.

18. Соснин Д.Ю., Ховаева Я.Б., Подъянова А.И. и др. Эритропоэтин как показатель тяжести хронической обструктивной болезни легких. Клиническая лабораторная диагностика 2018;63(11):691–5.

19. WHO laboratory manual for the examination and processing of human semen. 5th edn. WHO, 2010.

20. Варламова О.Н., Червяковская О.Д. Эритропоэтин и его биологическая роль. Медицина: теория и практика 2019;4(3):61–9.

21. Захаров Ю.М. Внепочечная продукция эритропоэтина и ее регуляция. Российский физиологический журнал им. И.М. Сеченова 2015;101(11): 1217–34.

22. Yasuoka Y., Fukuyama T., Izumi Y. et al. Erythropoietin production by the kidney and the liver in response to severe hypoxia evaluated by Western blotting with deglycosylation. Physiol Rep. 2020;8(12):e14485. DOI: 10.14814/phy2.14485.

23. Kobayashi T., Yanase H., Iwanaga T. et al. Epididymis is a novel site of erythro poietin production in mouse reproductive organs. Biochem Biophys Res Commun 2002;296(1):145–51. DOI: 10.1016/s0006-291x(02)00832-x.

24. Tug N., Kilic U., Karateke A. et al. Erythropoietin receptor-like immunostaining on human spermatozoa. Reprod Biomed Online 2010;21(5):718–20. DOI: 10.1016/j.rbmo.2010.05.022.

25. Tug N., Altunkaynak M.E., Aktas R.G. et al. Does erythropoietin affect motility of spermatozoa? Arch Gynecol Obstet 2010;281(5):933–38. DOI: 10.1007/s00404-009-1289-4.

26. Foresta C., Mioni R., Bordon P. et al. Erythropoietin and testicular steroidogenesis: the role of second messengers. Eur J Endocrinol 1995;132(1):103–8. DOI: 10.1530/eje.0.1320103.

27. Foresta C., Mioni R., Bordon P. et al. Erythropoietin stimulates testosterone production in man. J Clin Endocrinol Metab 1994;78(3):753–6. DOI: 10.1210/jcem.78.3.8126153.