Preview

Андрология и генитальная хирургия

Расширенный поиск

Как сохранить качество сперматозоидов при обработке в циклах вспомогательных репродуктивных технологий? Температурный фактор

https://doi.org/10.17650/2070-9781-2014-4-14-19

Полный текст:

Аннотация

В связи с широким распространением вспомогательных репродуктивных технологий важно обеспечение оптимальных условий для поддержания термотолерантности сперматозоидов. Между качеством сперматозоидов и температурой хранения образцов спермы существует прямая корреляция, поэтому для сохранения оплодотворяющей способности сперматозоидов in vitro требуется поддержание адекватной температуры. Однако температура, при которой функциональные характеристики сперматозоидов после эякуляции сохраняются наилучшим образом, до сих пор остается предметом множества дискуссий, а сведения об оптимальных для инкубации спермы температурных условиях достаточно противоречивы. В подавляющем большинстве публикаций сообщается о повреждающем влиянии чрезмерного нагрева на качество спермы. Однако инкубация образцов обработанной спермы в таких температурных условиях порежнему применяется на практике во многих эмбриологических лабораториях. Грамотный подход к подбору условий обработки и хранения спермы перед ее использованием для искусственного оплодотворения, учитывающий температурный фактор, позволит улучшить такие функциональные характеристики сперматозоидов, как их подвижность, морфология и оплодотворяющая способность. В представленном обзоре проанализированы современные данные о зависимости качества спермы от температуры инкубирования перед проведением процедуры искусственного оплодотворения

Об авторах

А. В. Зобова
Отделение вспомогательных технологий в лечении бесплодия ФГБУ «Научный центр акушерства, гинекологии и перинатологии им. В.И. Кулакова» Минздрава России, Москва
Россия


Н. П. Макарова
Отделение вспомогательных технологий в лечении бесплодия ФГБУ «Научный центр акушерства, гинекологии и перинатологии им. В.И. Кулакова» Минздрава России, Москва
Россия


Список литературы

1. Boomsma C.M., Heineman M.J., Cohlen B.J., Farquhar C. Semen preparation techniques for intrauterine insemination. Cochrane Database Syst Rev 2007;(4):CD004507.

2. Chen M.J., Bongso A. Comparative evaluation of two density gradient preparations for sperm separation for medically assisted conception. Hum Reprod 1999;14(3): 759–64.

3. Marchesi D.E., Biederman H., Ferrara S. et al. The effect of semen processing on sperm DNA integrity: comparison of two techniques using the novel Toluidine Blue Assay. Eur J Obstet Gynecol Reprod Biol 2010;151(2):176–80.

4. Franken D.R., van Wyk R., Stoumann C., Avari K. Temperature controlled centrifugation improves sperm retrieval. Andrologia 2011;43(3):217–21.

5. Otsuki J., Chuko M., Momma Y. et al. A comparison of the swim-up procedure at body and testis temperatures. J Assist Reprod Genet 2008;25(8):413–5.

6. Yavas Y., Selub M.R. Intrauterine insemination (IUI) pregnancy outcome is enhanced by shorter intervals from semen collection to sperm wash, from sperm wash to IUI time, and from semen collection to IUI time. Fertil Steril 2004;82(6):1638–47.

7. Aitken R.J., Allan I.W., Irvine D.S., Macnamee M. Studies on the development of diluents for the transportation and storage of human semen at ambient temperature. Hum Reprod 1996;11(10):2186–96.

8. Makler A., Deutch M., Vilensky A., Palti Y. Factors affecting sperm motility. VIII. Velocity and survival of human spermatozoa as related to temperatures above zero. Int J Androl 1981;4(5):559–69.

9. Petrella C., Hsieh J., Thrift K. et al. Optimizing incubation conditions for the preservation of sperm motility in processed semen samples. Fertil Steril 2005;84(2):513–5.

10. Thonneau P., Bujan L., Multigner L., Mieusset R. Occupational heat exposure and male fertility: a review. Hum Reprod 1998;13(8):2122–5.

11. Calamera J.C., Fernandez P.J., Buffone M.G. et al. Effects of long-term in vitro incubation of human spermatozoa: functional parameters and catalase effect. Andrologia 2001;33(2): 79–86.

12. Hammadeh M.E., Strehler E., Zeginiadou T. et al. Chromatin decondensation of human sperm in vitro and its relation to fertilization rate after ICSI. Arch Androl 2001;47(2):83–7.

13. Dalzell L.H., McVicar C.M., McClure N. et al. Effects of short and long incubations on DNA fragmentation of testicular sperm. Fertil Steril 2004;82(5):1443–5.

14. Peer S., Eltes F., Berkovitz A. et al. Is fine morphology of the human sperm nuclei affected by in vitro incubation at 37 degrees C? Fertil Steril 2007;88(6):1589–94.

15. Schwarz C., Köster M., van der Ven K., Montag M. Temperature-induced sperm nuclear vacuolisation is dependent on sperm preparation. Andrologia 2012;44 Suppl 1: 126–9.

16. Marin-Briggiler C.I., Tezon J.G., Miranda P.V., Vazquez-Levin M.H. Effect of incubating human sperm at room temperature on capacitation-related events. Fertil Steril 2002;77(2):252–9.

17. Esfandiari N., Saleh R.A., Blaut A.P. et al. Effects of temperature on sperm motion characteristics and reactive oxygen species. Int J Fertil Womens Med 2002;47(5):227–33.

18. Jackson R.E., Bormann C.L., Hassun P.A. et al. Effects of semen storage and separation techniques on sperm DNA fragmentation. Fertil Steril 2010;94(7):2626–30.

19. Lachaud C., Tesarik J., Caсadas M.L., Mendoza C. Apoptosis and necrosis in human ejaculated spermatozoa. Hum Reprod 2004;19(3):607–10.

20. Petrella C., Hsieh J., Blake E. et al. Human sperm can survive at room temperature for weeks: Measured by motility and viability of sperm maintained under various conditions. Fertil Steril 2003;80:210.

21. Thijssen A., Klerkx E., Huyser C. et al. nfluence of temperature and sperm preparation on the quality of spermatozoa. Reprod Biomed Online 2014;28(4): 436–42.

22. Schuffner A., Morshedi M., Vaamonde D. et al. Effect of different incubation conditions on phosphatidylserine externalization and motion parameters of purified fractions of highly motile human spermatozoa. J Androl 2002;23(2):194–201.

23. Gallup G.G. On the origin of descended scrotal testicles: the activation hypothesis. Evol Psychol 2009;7(4):517–26.

24. Appell R.A., Evans P.R. The effect of temperature on sperm motility and viability. Fertil Steril 1977;28(12):1329–32.

25. Berkovitz A., Eltes F., Ellenbogen A. et al. Does the presence of nuclear vacuoles in human sperm selected for ICSI affect pregnancy outcome? Hum Reprod 2006;21(7):1787–90.

26. Neyer A., Vanderzwalmen P., Bach M. et al. Sperm head vacuoles are not affected

27. by in-vitro conditions, as analysed by a system of sperm-microcapture channels. Reprod Biomed Online 2013;26(4):368–77.

28. Henkel R. Sperm processing for IVF. In: Nagy Z.P., Varghese A., Agarwal A. Practical manual of in vitro fertilization: Advanced methods and novel devices. Springer, 2012.

29. Selvaraj P., Selvaraj K., Kalaichelvi S., Mahalakshmi R. Semen preparation techniques in intrauterine insemination: A comparison of non-temperature and temperature controlled centrifugation in cases of unexplained infertility. J Hum Reprod Sci 2013;6(4):241–4.

30. Cohen J., Fehilly C.B., Walters D.E. Prolonged storage of human spermatozoa at room temperature or in a refrigerator. Fertil Steril 1985;44(2):254–62.

31. Lai Y.M., Chang F.H., Lee C.L. et al. Coculture of human spermatozoa with reproductive tract cell monolayers can enhance sperm functions better than coculture with Vero cell monolayers. J Assist Reprod Genet 1996;13(5):417–22.

32. Fabbri R., Porcu E., Lenzi A. et al. Follicular fluid and human granulose cell cultures: influence on sperm kinetic parameters, hyperactivation, and acrosome reaction. Fertil Steril 1998;69(1):112–7.

33. Yao Y., Ho P., Yeung W.S. Human oviductal cells produce a factors(s) that maintains the motility of human spermatozoa in vitro. Fertil Steril 2000;73(3):479–86.

34. Aitken R.J., Clarkson J.S., Fishel S. Generation of reactive oxygen species, lipid peroxidation, and human sperm function. Biol Reprod 1989;41(1):183–97.

35. Aitken R.J. The Amoroso Lecture. The human spermatozoon – a cell in crisis? J Reprod Fertil 1999;115(1):1–7.

36. Saleh R.A., Agarwal A. Oxidative stress and male infertility: from research bench to clinical practice. J Androl 2002;23(6):737–52.

37. Iwasaki A., Gagnon C. Formation of reactive oxygen species in spermatozoa of infertile patients. Fertil Steril 1992;57(2): 409–16.

38. Jones R., Mann T., Sherins R. Peroxidative breakdown of phospholipids in human spermatozoa, spermicidal properties of fatty acid peroxides, and protective action of seminal plasma. Fertil Steril 1979;31(5): 531–7.

39. Alvarez J.G., Storey B.T. Differential incorporation of fatty acids into and peroxidative loss of fatty acids from phospholipids of human spermatozoa. Mol Reprod Dev 1995;42(3):334–46.

40. Zini A., de Lamirande E., Gagnon C. Reactive oxygen species in semen of infertile patients: levels of superoxide dismutase- and catalase-like activities in seminal plasma and spermatozoa. Int J Androl 1993;16(3):183–8.

41. Twigg J., Irvine D.S., Houston P. et al. Iatrogenic DNA damage induced in human spermatozoa during sperm preparation: protective significance of seminal plasma. Mol Hum Reprod 1998;4(5):439–45.

42. Aitken R.J., Gordon E., Harkiss D. et al. Relative impact of oxidative stress on the functional competence and genomic integrity of human spermatozoa. Biol Reprod 1998;59(5):1037–46.

43. Aitken R.J., Irvine D.S., Wu F.C. Prospective analysis of sperm-oocyte fusion and reactive oxygen species generation as criteria for the diagnosis of infertility. Am J Obstet Gynecol 1991;164(2):542–51.

44. Oehninger S., Blackmore P., Mahony M., Hodgen G. Effects of hydrogen peroxide on human spermatozoa. J Assist Reprod Genet 1995;12(1):41–7.

45. de Lamirande E., Gagnon C. Reactive oxygen species and human spermatozoa. I. Effects on the motility of intact spermatozoa and on sperm axonemes. J Androl 1992;13(5):368–78.

46. de Lamirande E., Gagnon C. Reactive oxygen species and human spermatozoa. II. Depletion of adenosine triphosphate plays an important role in the inhibition of sperm motility. J Androl 1992;13(5):379–86.

47. Alvarez J.G., Storey B.T. Spontaneous lipid peroxidation in rabbit epididymal spermatozoa: its effect on sperm motility. Biol Reprod 1982;27(5):1102–8.

48. Armstrong J.S., Rajasekaran M., Chamulitrat W. et al. Characterization of reactive oxygen species induced effects on human spermatozoa movement and energy metabolism. Free Radic Biol Med 1999; 26(7–8):869–80.


Для цитирования:


Зобова А.В., Макарова Н.П. Как сохранить качество сперматозоидов при обработке в циклах вспомогательных репродуктивных технологий? Температурный фактор. Андрология и генитальная хирургия. 2014;15(4):14-19. https://doi.org/10.17650/2070-9781-2014-4-14-19

For citation:


Zobova A.V., Makarova N.P. How to maintain the sperm quality during the semen processing in assisted reproductive technology? The temperature factor. Andrology and Genital Surgery. 2014;15(4):14-19. (In Russ.) https://doi.org/10.17650/2070-9781-2014-4-14-19

Просмотров: 374


Creative Commons License
Контент доступен под лицензией Creative Commons Attribution 4.0 License.


ISSN 2070-9781 (Print)
ISSN 2412-8902 (Online)